2，4—D和NAA对黄豆芽品质和形态的影响

摘要：在室温条件下研究不同浓度生长调节剂２，４－Ｄ﹑ＮＡＡ对黄豆芽品质和形态影响的差异性，旨在为黄豆芽生产工作选择最适浓度的生长调节剂提供指导。结果表明，黄豆在发芽过程中，用清水处理时蛋白质含量最高，用１０－９ ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ处理时维生素Ｃ（ＶＣ）含量最高，用１０－８ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ处理时ＶＣ含量最高；另外使用１０－８ ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ处理时黄豆芽胚根长度和面积最大，使用１０－５ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ处理时黄豆芽下胚轴体积最大。

关键词：黄豆芽；生长调节剂；品质；形态

中图分类号：Ｓ３１１ 文献标识码：Ａ 文章编号：0439－８114（２０12）18－4086-04

Effects of 2,4-D and NAA on Morphology and Quality of Soybean Sprout

ＪＩＡＮＧ Ｆｕ－ｗｅｎ１，WANG Su-fang２

（1.Institute of Economics Crops，Ｘｉｎｘｉａｎｇ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ， Ｘｉｎｘｉａｎｇ ４５３００３， Ｈｅｎａｎ， Ｃｈｉｎａ；

２．College of Life Sciences，Ｈｅｎａｎ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， Ｘｉｎｘｉａｎｇ ４５３００３， Ｈｅｎａｎ， Ｃｈｉｎａ）

Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ２，４－Ｄ ａｎｄ ＮＡＡ ｏｎ ｔｈｅ ｑｕａｌｉｔｙ ａｎｄ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｏｆ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｐｒｏｕｔ ｗａｓ ｓｔｕｄｉｅｄ ａｔ ｒｏｏｍ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｔｏ ｏｐｔｉｍｉｚｅ ｔｈｅ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ． Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｏｃｅｓｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ， ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ ｗａｓ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｉｎ ｗａｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ； ＶＣ ｃｏｎｔｅｎｔ ｗａｓ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｗｈｅｎ ２，４－Ｄ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｗａｓ １０－９ ｍｏｌ／Ｌ ｏｒ ＮＡＡ ｗａｓ １０－８ ｍｏｌ／Ｌ． Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ， ｗｈｅｎ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ２，４－Ｄ ｗａｓ １０－８ ｍｏｌ／Ｌ， ｔｈｅ ｒａｄｉｃｌｅ ｌｅｎｇｔｈ ａｎｄ ａｒｅａ ｏｆ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｐｒｏｕｔ ｗａｓ ｔｈｅ ｌａｒｇｅｓｔ． Ｔｈｅ ｖｏｌｕｍｅ ｏｆ ｈｙｐｏｃｏｔｙｌｓ ｗａｓ ｔｈｅ ｌａｒｇｅｓｔ ｗｈｅｎ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ＮＡＡ ｗａｓ １０－５ ｍｏｌ／Ｌ．

Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：ｓｏｙｂｅａｎ ｓｐｒｏｕｔ； ｇｒｏｗｔｈ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ； ｑｕａｌｉｔｙ； ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ

黄豆芽具有极高的营养价值，但为追求更高的经济效益，人们在生产和出售过程中普遍使用激素类化学物质缩短黄豆芽生长期，增强“嫩白﹑粗壮”效果。目前常见的用于黄豆芽生产的激素类化学物质有ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ两种人工合成生长调节剂。生长调节剂对生长的作用主要是促进细胞的生长，特别是细胞的伸长。生长调节剂能够改变植物体内的营养物质分配，在生长调节剂分布较丰富的部分得到的营养物质就多，形成分配中心［1-4］。

众所周知，用激素催生的黄豆芽对人体十分有害。因此试验拟以市场上出售的普通黄豆为材料，测量经不同浓度生长调节剂ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ处理下黄豆芽胚根﹑下胚轴﹑子叶不同部位蛋白质和维生素Ｃ（ＶＣ）的含量，以及不同浓度ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ处理对黄豆芽胚根长﹑面积﹑体积，下胚轴长﹑面积﹑体积的影响，初步探讨不同浓度ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ对黄豆芽品质和形态的影响，旨在为黄豆芽生产工作选择最适浓度的生长调节剂提供指导。

１ 材料与方法

１．１ 材料

１．１．１ 原料 市场上出售的普通黄豆。

１．１．２ 试剂及器材 发芽试验：２，４－Ｄ、ＮＡＡ，花盆、网目布、纱布、锡纸、培养皿。蛋白质含量的分析：考马斯亮蓝Ｇ－２５０、去离子水，天平、研钵、离心管、离心机、移液枪、分光光度计。ＶＣ含量的分析：５ ｇ／Ｌ淀粉液、０．０００ １６７ ｍｏｌ／Ｌ碘酸钾溶液、１０ ｇ／Ｌ碘化钾溶液、质量分数为２％的盐酸、去离子水，天平、研钵、离心管、离心机、移液枪、三角瓶、滴定架、滴定管。形态分析：扫描仪。

１．２ 方法

１．２．１ 发芽试验 选用外表无残缺、健康、发芽势好、发芽率高的新鲜黄豆。按浓度从大到小的顺序配制浓度分别为１×１０－５、１×１０－６、１×１０－７、１×１０－８、１×１０－９ ｍｏｌ／Ｌ的ＮＡＡ溶液和２，４－Ｄ溶液。取１１个培养皿，其中5个培养皿依次加入１０ ｍＬ上述5种浓度的ＮＡＡ溶液，另5个培养皿依次加入１０ ｍＬ上述对应浓度的２，４－Ｄ溶液，最后一个培养皿中加入１０ ｍＬ自来水作为对照。取２２个花盆刷洗干净，两个一组组成１１个组合，每个组合中一个花盆的底部放置一层细度为４００目的布（防止豆芽的根长出花盆），然后上面再放一个花盆，最后每个组合各放入２００粒挑选的黄豆试样，盖上３～４层的纱布，并用锡纸覆盖严实。将１１个组合的花盆依次放入以上１１个培养皿中，每天定时用自来水缓慢小心冲洗两次。

１．２．２ 蛋白质含量的分析 选用考马斯亮蓝法［5］。挑选用不同浓度生长调节剂处理过的、长相整齐一致且性状稳定的黄豆芽，用天平称取０．５ ｇ黄豆子叶的头各３份放入研钵中，充分研磨，用移液枪分别吸取４ ｍＬ去离子水冲洗研钵并加入到１０ ｍＬ离心管中，两次，以１０ ０００ ｒ／ｍｉｎ离心５ ｍｉｎ，上清液为提取液。取３支试管，按表１取样，将各管充分摇匀，放置２ ｍｉｎ，在５９５ ｎｍ处比色，记录３个重复的吸光度Ａ１、Ａ２、Ａ３，取平均值Ａ＝﹙Ａ１+Ａ２+Ａ３﹚／３，其中，样品中蛋白质含量﹙μｇ／ｇ﹚＝118.25×A×提取液总体积﹙ｍＬ﹚／［测定时所取体积（ｍＬ）×样品鲜重（ｇ）］＝１１８．２５×A×８／（０．１×０．５），１１８．２５是用牛血清白蛋白做蛋白质标准物获得的吸光度为1时测定液蛋白质的质量（μｇ）的数值。以相同的方法测量黄豆芽下胚轴和胚根中蛋白质的含量。

１．２．３ ＶＣ含量的分析 选用碘滴定法［5］。样品的提取方法同１．２．２。在三角瓶中用移液管注入１０ ｇ／Ｌ碘化钾溶液０．５ ｍＬ﹑５ ｇ／Ｌ淀粉液１．０ ｍＬ﹑提取液５．０ ｍＬ、去离子水３．５ ｍＬ，共计１０ ｍＬ，用０．０００ １６７ ｍｏｌ／Ｌ碘酸钾溶液滴定，一滴滴加入，并时时摇动三角瓶至微蓝色１ ｍｉｎ不退即可，记录所用０．０００ １６７ ｍｏｌ／Ｌ碘酸钾溶液的体积。另外，空白对照为在三角瓶中用移液管注入１０ ｇ／Ｌ碘化钾溶液０．５ ｍＬ﹑５ ｇ／Ｌ淀粉液１．０ ｍＬ﹑质量分数为２％的盐酸５．０ ｍＬ﹑去离子水３．５ ｍＬ，共计１０ ｍＬ。样品所含ＶＣ的含量（ｍｇ／ｇ）＝﹙Ｖ×０．０８８／Ｂ﹚×ｂ／ａ，其中，Ｖ为滴定样品所用的０．０００ １６７ ｍｏｌ／Ｌ碘酸钾溶液的体积（ｍＬ），１ ｍＬ ０．０００ １６７ ｍｏｌ／Ｌ碘酸钾溶液相当于０．０８８ ｍｇ ＶＣ，Ｂ为滴定时所吸取的样品液体积（ｍＬ），ｂ为样品液的总体积（ｍＬ），ａ为样品的质量（ｇ）。以相同的方法测量黄豆芽下胚轴和胚根中ＶＣ的含量。

１．2．４ 形态分析 用扫描仪分别扫描不同浓度ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ处理下黄豆芽胚根和下胚轴的长度﹑面积﹑体积，每个浓度设２０个重复。

１．2．５ 统计分析 用邓肯氏新复极差法进行各种数据的分析比较［6］。

２ 结果与分析

２．１ 生长调节剂对黄豆芽品质的影响

由表2可知，在黄豆芽生产过程中添加不同浓度的生长调节剂２，４－Ｄ对黄豆芽子叶和下胚轴蛋白质含量无显著影响，只对黄豆芽胚根部位蛋白质含量有影响，其表现为２，４－Ｄ浓度为１０－６﹑１０－７、１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根蛋白质含量与对照相比降低但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时豆芽胚根蛋白质含量与对照相比显著降低，因此用清水处理的黄豆芽蛋白质含量最高。在黄豆芽生产过程中添加的不同浓度的生长调节剂２，４－Ｄ对黄豆芽子叶和下胚轴ＶＣ含量的影响表现为，２，４－Ｄ浓度为１０－６、１０－７﹑１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽子叶和下胚轴ＶＣ含量与对照相比呈上升趋势但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴ＶＣ含量与对照相比显著上升，并在此浓度下ＶＣ含量达到最高。

由表3可知，在黄豆芽生产过程中添加不同浓度的生长调节剂ＮＡＡ对黄豆芽子叶和下胚轴蛋白质含量均无显著影响，只对胚根部位蛋白质含量有影响，表现为ＮＡＡ浓度为１０－５、１０－６ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根蛋白质含量与对照相比呈现下降的趋势但不显著，ＮＡＡ浓度为10-7、10-8、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根蛋白质含量与对照相比显著降低。在黄豆芽生产过程中添加不同浓度的生长调节剂ＮＡＡ对黄豆芽子叶ＶＣ含量的影响表现为，ＮＡＡ浓度为１０－５﹑１０－６ ｍｏｌ／Ｌ时，黄豆芽子叶和下胚轴ＶＣ含量与对照相比呈现上升的趋势但不显著，ＮＡＡ浓度为１０－７、１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽子叶和下胚轴ＶＣ含量与对照相比呈现显著上升的趋势，且均在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时ＶＣ含量达到最高。

２．２ 生长调节剂对黄豆芽形态的影响

由表4可知，在黄豆芽生产过程中添加生长调节剂２，４－Ｄ对黄豆芽胚根的体积没有显著影响，而对胚根的长度、面积均有影响，其表现为２，４－Ｄ浓度为１０－６ ｍｏｌ／Ｌ时胚根长度与对照相比变小但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－７ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根长度与对照相比增长但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根长度与对照相比呈现显著增长的趋势，且在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时达到最大。２，４－Ｄ浓度为１０－６﹑１０－７ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根面积与对照相比呈现增大的趋势但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根面积与对照相比呈现显著增大的趋势，且在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时达到最大。在黄豆芽生产过程中添加生长调节剂２，４－Ｄ对黄豆芽下胚轴的体积没有显著影响，而对下胚轴的长度、面积均有影响，其表现为２，４－Ｄ浓度为１０－６ ｍｏｌ／Ｌ时下胚轴长度与对照相比变大但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－７ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴长度与对照相比减小也不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴长度与对照相比呈现变小的趋势，且在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时达到最小；２，４－Ｄ浓度为１０－６﹑１０－７ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴面积与对照相比呈现变小的趋势但不显著，２，４－Ｄ浓度为１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴面积与对照相比呈现显著变小的趋势，且在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时达到最小。

由表5可知，在黄豆芽生产过程中添加生长调节剂ＮＡＡ对黄豆芽胚根的长度和面积均无影响，只对黄豆芽胚根的体积有影响，其表现为ＮＡＡ浓度为１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根体积与对照相比增大但不显著，ＮＡＡ浓度为１０－７﹑１０－６ ｍｏｌ／Ｌ时胚根体积与对照相比变小或不变，且不显著，ＮＡＡ浓度为１０－５ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽胚根体积与对照相比呈现显著变小的趋势，且在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时胚根体积达到最大，在１０－５ ｍｏｌ／Ｌ时胚根体积达到最小。ＮＡＡ对黄豆芽下胚轴的长度和面积也无显著影响，只对黄豆芽下胚轴的体积有影响，其表现为ＮＡＡ浓度为１０－８、１０－９ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴体积与对照相比显著减小，ＮＡＡ浓度为１０－７﹑１０－６ ｍｏｌ／Ｌ时下胚轴体积与对照相比变大但不显著，ＮＡＡ浓度为１０－５ ｍｏｌ／Ｌ时黄豆芽下胚轴体积与对照相比呈现增大趋势但不显著，且在１０－８ ｍｏｌ／Ｌ时下胚轴体积达到最小，在１０－５ ｍｏｌ／Ｌ时体积达到最大。

通过观察ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ对黄豆芽胚根、下胚轴长度的影响能得出，ＮＡＡ﹑２，４－Ｄ对黄豆芽胚根和下胚轴的影响处于一种互补状态，即如果使用的生长调节剂浓度能很好地促进胚根的生长，但对下胚轴就起抑制作用。如果使用的生长调节剂能很好促进下胚轴的生长，则对胚根起抑制作用。这种规律在生产上表现为胚根长则下胚轴短，胚根短则下胚轴长，生产无根黄豆芽依据的就是这个原理。

3 结论与讨论

通过对不同浓度生长调节剂２，４－Ｄ﹑ＮＡＡ对黄豆芽品质和形态影响差异性的分析，可以得出如下结论。

１）在黄豆发芽的过程中使用生长调节剂可以加速蛋白质的降解，因此黄豆发芽后蛋白质含量降低。故用清水处理黄豆，黄豆芽的蛋白质含量最高。

２）黄豆中本不含ＶＣ，但在发芽过程中使用的生长调节剂促使黄豆芽体内合成了新的ＶＣ，１０－９ ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ使ＶＣ的合成量达到最高，１０－８ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ使ＶＣ的合成量达到最高，故生产上可用１０－９ ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ或１０－８ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ处理黄豆，使豆芽在此浓度下有最高的ＶＣ含量。因生长调节剂对黄豆芽蛋白质和ＶＣ含量的影响表现出不一致且相互冲突的规律，但考虑到日常生活中人们摄取蛋白质的来源较广，而摄取ＶＣ的来源较狭窄，所以着重从对ＶＣ含量影响的角度来考虑，故在生产过程中使用１０－９ ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ或１０－８ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ处理较合适。

３）１０－８ ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ处理使黄豆芽胚根长度和面积最大，但此浓度时下胚轴长度和面积最小；在１０－５ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ处理下黄豆芽胚根体积最小，但此浓度时下胚轴体积最大。因此生长调节剂对黄豆芽胚根形态和下胚轴形态的影响表现出不一致且相互冲突的规律，但考虑到日常生活中人们食用的部位主要是下胚轴，所以侧重从对下胚轴的影响这个角度来考虑，故在生产过程中使用１０－8 ｍｏｌ／Ｌ ２，４－Ｄ或１０－５ ｍｏｌ／Ｌ ＮＡＡ处理较合适。

参考文献：

［１］ 韩德元．植物生长调节剂原理与应用［Ｍ］． 北京：北京科学技术出版社，１９９７.

［２］ 潘瑞炽． 植物生理学［Ｍ］．北京：高等教育出版社，１９９５.

［３］ 崔秀珍，黄中文，薛 香，等． 试验统计分析［Ｍ］．北京：中国农业科学技术出版社，２００２.

［４］ 张志良，翟伟箐．植物生理学实验指导［Ｍ］．第3版.北京：高等教育出版社，２００３.

［５］ 赵普庆，童富淡，王俏梅．生长素信号转导研究进展［Ｊ］．细胞生物学杂志，２００４，２６（２）：１１３－１１８．

［６］ 王金祥，严正龙，潘瑞炽．不定根形成与植物激素的关系［Ｊ］．植物生理学通讯，２００５，４１（２）：１３３－１４２．

（责任编辑 田宇曦）

收稿日期：２０１２－０２－２４

作者简介：蒋福稳（１９７２－），男，河南光山人，副研究员，主要从事植物生长技术研究，（电话）１３９４９６１３１９３（电子信箱）ｊｉａｎｇｆｕｗｅｎ１１１８＠１２６．ｃｏｍ；

通讯作者，王素芳，实验师，（电话）１５８３６１８９９３９（电子信箱）ｗａｎｇ２０１０ｓｕｆａｎｇ＠１２６．ｃｏｍ。